Каталог / БИОЛОГИЧЕСКИЕ НАУКИ / Биофизика
Структурно-функциональные изменения нейронов моллюска после криоконсервации
Диссертация
Автор: Дмитриева, Евгения Владимировна
Заглавие: Структурно-функциональные изменения нейронов моллюска после криоконсервации
Справка об оригинале: Дмитриева, Евгения Владимировна. Структурно-функциональные изменения нейронов моллюска после криоконсервации : диссертация ... кандидата биологических наук : 03.00.02 Пущино, 2004 118 c. : 61 04-3/1385
Физическое описание: 118 стр.
Выходные данные: Пущино, 2004
Подождите идет оформление заказа
500 руб. |
|
Введение
1 Обзор литературы
2 Материалы и методы
21 Объект исследования
22 Подготовка животного к опыту
23 Замораживание-оттаивание изолированного моллюска мозга зЗ
24 Люминесцентная микроскопия
25 Исследование ультраструктуры
26 Культура in vitro
3 Результаты и обсуждение
32 Изменение функциональной активности нейронов моллюска (люминесцентная микроскопия)
322 Изучение изменения функциональной активности нейронов моллюска после криоконсервации
323 Люминесцентная микроскопия изолированного мозга при длительном инкубировании при +
324 Изменение функционального состояния синтетического аппарата (по параметру а) нейронов изолированного мозга моллюска при изменении температуры инкубирования изолированного мозга
33 Изучение изменений ультраструктуры нейрона МПЗ мозга моллюска после криоконсервации п
31 Ультраструктура контрольных нейронов
4 Исследование поведения в культуре in vitro нейронов криоконсервированного мозга моллюска Lymnaea stagnalis L
Заключение
Выводы
Приложение
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1 Обзор литературы
2 Материалы и методы
21 Объект исследования
22 Подготовка животного к опыту
23 Замораживание-оттаивание изолированного моллюска мозга зЗ
24 Люминесцентная микроскопия
25 Исследование ультраструктуры
26 Культура in vitro
3 Результаты и обсуждение
32 Изменение функциональной активности нейронов моллюска (люминесцентная микроскопия)
322 Изучение изменения функциональной активности нейронов моллюска после криоконсервации
323 Люминесцентная микроскопия изолированного мозга при длительном инкубировании при +
324 Изменение функционального состояния синтетического аппарата (по параметру а) нейронов изолированного мозга моллюска при изменении температуры инкубирования изолированного мозга
33 Изучение изменений ультраструктуры нейрона МПЗ мозга моллюска после криоконсервации п
31 Ультраструктура контрольных нейронов
4 Исследование поведения в культуре in vitro нейронов криоконсервированного мозга моллюска Lymnaea stagnalis L
Заключение
Выводы
Приложение
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
Введение:
криопротекторов (диметилсульфоксид, глицерин) позволили с разной степенью сохранности заморозить ткань мозга крыс и приматов, в том числе человека (Sckott et all, 1986; Silani et all, 1988), культуру нервной ткани (Kawamoto, Barret, 1986; Petite, Calvet 1997; Sckott et all, 1986). В изучение прошедших замораживание нейронов входило тестирование жизнеспособности и описание морфологической сохранности, роста отростков в культуре in vitro, состояния рецепторов, синтеза медиаторов, восстановления электрической активности, приживляемости трансплантатов в мозге животных (Jensen et all,1985; Sckott et all, 1986; Sucher et all, 1992). Успех криоконсервации в значительной степени зависел от возраста донора, скоростей замораживания-оттаивания, химической природы и концентрации криопротектора. Несмотря на актуальность проблемы, введение в практику нейромедицины методов криоконсервации, пока не получило развития в основном криозащиты. Нейроны и нервы позвоночных и беспозвоночных животных благодаря свойствам электровозбудимых мембран и хорошо отлаженным способам регистрации электрической активности используются для исследований механизмов действия криопротекторов и низких температур (Pribor, Nara, 1969; Lenz et al., 1975; Menz, 1975; Scott and Lew, 1986; Гахова и др., 1989; Frodl et al., 1994; Чекурова, 1994; Kislov et al., 2000). В ряде работ, выполненных на нейронах и аксонах позвоночных и беспозвоночных животных, показано, что после криоконсервации в присутствии защитных агентов восстанавливаются электрические параметры нейрональных мембран (Asher, 1972; Pasic, DesaFaria, 1979; Гахова и др., 1989; Sucher et al., 1991; Decherchi et al., 1997; Gakhova et al., 1997). Однако сохранение электрических свойств нейрональных мембран после криоконсервирования нейронов не может быть единственным показателем жизнеспособности клеток. Раскрытие основных механизмов перехода клеток в недеятельное состояние при глубоком замораживании и выхода из него сопря6 из-за непредсказуемости результатов, обусловленных и путей недостаточностью сведений о механизмах криоповреждений
Список литературы:
1. Электронномикроскопические данные о мезосомоподобных и миелиноподобных структурах у синезеленых водорослей. Микробиология. 47(4). 739-44.
3. Цитология оогенеза. М: Наука, 204с.
4. Архипов В.В., Костенко М.А. 1
5. Подвижность и взаимодействие в культуре изолированных нейронов взрослых моллюсков Эвол. биохим. и физиол. Т. 17, №2. 187-191.
6. Белоус A.M., Гордиенко Е.А., Розанов Л.Ф. 1
7. Замораживание и криопротекция Биохимия мембран: Уч. пособие для биол. и мед. спец. вузов под ред. Болдырева А.А. М.: высш. шк. 80с
8. Белоус A.M., Грищенко В.И. (1994) Криобиология. Киев, «Наукова Думка», 432 с
10. Перезимовка водных организмов Гидробиологический журнал, 9(1-3). 45-82.
11. Боровягин В.Л., Сахаров Д.А. 1
12. Ультраструктура гигантских нейронов тритонии. Атлас. М.: Наука. 75с.
14. Изменение синтеза РНК при привыкании нейрона моллюска к электрическому раздражению В кн. Клеточные механизмы памяти. Пущино-на-Оке. 146-156.
16. Идентификация гигантских нейронов в центральной нервной системе брюхоногих моллюсков.// в сб. Приборы и методы для микроэлектродного исследования клеток. Пущино. 18-27.
17. Бродский В.Я. 1960. О способах фиксации и подготовки материала для количественного цитохимического анализа. Т.2, 5, 613с.
19. Трофика клетки. М: Наука. 356с.
21. Структурно-функциональная характеристика гигантских нейронов прудовика.// Дис...канд.биол.наук.: Пущино, 111с.
22. Виленчик М.М. (1983) Сколько лет можно хранить зародышевые клетки в криоконсервированном состоянии без существенного повреждения их генома. Консервация генетических ресурсов. Пущино: ОНТИПНЦРАН.21С.
23. Электронная гистохимия. М. Мир, 485с., с.45.
25. Трансмембранные ионные потоки возможные регуляторы синтеза РНК в нейронах: Дис...к-т биол.наук Пущино, Инт биофизики клетки, 206с. 16,Гахова Э.Н. 1
26. Генетический криобанк как способ сохранения биоразнообразия водных беспозвоночных// Биофизика живой клетки, т.6,с.21-27.
27. Гахова Э.Н., Дмитриева Е.В. 2
28. Криоконсервация нервной ткани //Биофизика живой клетки, т. 7, с.65-68. 108 1.
29. Гигантские нейроны сохраняют жизнеспособность после глубокого замораживания мозга пресноводного моллюска Lymnaea stagnalis Ь//Криобилогия. X2l, 19-21
30. Гахова Э.Н., Корн О.М., БуцукС.В. 1
32. Гахова Э.Н., Крастс И.В., Найденко Т.Х., Савельева Н.А., Бессонов Б.И., БуцукС.В., Вепринцев Б.Н. 1
33. Развитие зародышей морского ежа после низкотемпературной криоконсервации //Онтогенез, т. 19. с. 175-180
34. Голдовский A.M. (1981) Анабиоз. Л.: Наука, 136 с.
35. Гольцев А.Н., Гурина Т.М., Бабенко Н.Н., Останков М.В. 2
36. Влияние различных режимов криоконсервировании на некоторые характеристики эмбриональных нервных клеток Проблемы криобиологии, №1. 46-50
38. Исследование генерализованного метаболического ответа нервных клеток на смену функционального состояния и на действие повреждающих факторов: Дис... д-р биол. наук /Институт биофизики клетки РАН (ИБК РАН) Защищена 2000.12.06. УДК 576.3.331. 147 с.: 5 таб.} 42 ил.} Библиогр.: 416 назв.
39. Гордон Р.Я., Бочарова Л.С., Попов В.И., Карнаухов В.Н. 1
40. Различия в состоянии рибосом нервных клеток, выявляемые при флуорохромировании акридиновым оранжевым.// Цитология, 31(1). 7379.
41. Дмитриева Е.В. Гахова Э.Н., Карнаухов В.Н., Карнаухова Н.А., Кислов А.Н., Сергиевич Л.А. (2004). Изменение синтетической активности нейронов изолированного мозга моллюска Lymnaea stagnalis L после замораживания в жидком азоте// Материалы XYII совещания «Консервация генетических ресурсов», 19-21 ноября 2001г., Пущино.
43. Исследование метаболизма РНК и изменений в ультраструктуре и цитоморфологии нейрона при генерации им потенциалов действия: Дис.. .к-т биол.наук /Институт биофизики клетки РАН (ИБК РАН). 162с.
44. Дьяконова Т.Л., Вепринцев Б.Н. 1
45. Особенности структурной и функциональной организации и метаболической активности нейронов прудовика. М. Деп. В ВИНИТИ 01.06.70., №819-69, 26с
46. Моллюски пресных вод СССР. М. Изд-во Акад. Наук СССР, 376с.
48. Электрофизиологические характеристики гигантских нейронов моллюска большого прудовика В сб. Биофизика живой клетки. Под ред. Акад. Франка Г.М. Пущино,
49. Зернов А. 1928.0 зимовке водяных организмов во льду и мерзлой земле// Русский гидробиологический журнал, 7(1-2). 1-7. 109
50. Криоконсервированные нейроны Lymnaea stagnalis способны к морфологической дифференцировке в культуре //Биофизика, т. 49, вып. 4, с. 710-714.
51. Каранова М.В., Дмитриева Е.В., Березин Д.Е., Гахова Э.Н. (2004) Измерение точки замерзания тканевых жидкостей прудовика Lymnaea stagnalis L и ротана Perccottus glenhi как тест на присутствие криопротекторов// Материалы XYII совещания «Консервация генетических ресурсов», 19-21 ноября 2001г., Пущино.
53. Люминесцентный спектральный анализ клетки. М. Наука, 207с.
55. Биологические функции каротиноидов. М.: Наука, 240.
57. Спектральный анализ в клеточном мониторинге состояния окружающей среды. М.: Наука, с. 186.
58. Карнаухов В.Н., Вартонь С. 1
59. Ультраструктурная организация каротиноидсодержащих гранул в нейронах моллюсков Цитология. Т. 13,№9. 1088-1093.
60. Карнаухов В.Н., Карнаухова Н.А., Яшин В.А. 1
61. Методы и техника флуоресцентной диагностики. ОНТИ НЦБИ, Пущино. 32с.
62. Карнаухов В.Н., Яшин В.А., Казанцев А.П., Карнаухова Н.А., Кулаков В.И. 1
63. Двухволновый микрофлуориметр-фотометр на базе стандартных блоков и узлов. Цитология. Т.29, №1, с.50-53.
64. Карнаухова Н.А., Сергиевич Л.А., Дмитриева Е.В., Гахова Э.Н., Карнаухов В.Н. 2
65. Исследование функциональной активности нейронов ганглиев большого прудовика при изменении температуры. Биофизика. Т. 47, вып. 6, 1080-1985сс.
66. Катков И.И. (1999) Некоторые аспекты осмотических реакций клеток.
67. Основные физические явления и условия существования точки максимальн ого отклонения объема. Проблемы криобиологии, вып.2, с. 3-11.
68. Кислов А.Н., Пластинкин Д.В. 1
69. Действие некоторых криопротекторов на мембрану нейронов моллюска //Биофизика живоц клетки,, Т.6, с. 118-120.
70. Кленикова В.А., Малинаускайте Л.Д. 1
71. Накопление РНК в теле нейронов как показатель их функциональной деафферентации// Физиол. ж.СССР. 66(3). 339-343
72. Корнилова СВ., Леонтьев B.C., Шкорбатов А.Г., Благой Ю.П., Козлов А.В., Григорьев Д.Н. (1993) Изучение действия криопротекторов на макромолекулярные параметры Д1Ж. Проблемы криобиологии, вып. 4, 20-24.
74. Выделение одиночных нервных клеток из мозга моллюска Lymnaea stagnalis для дальнейшего культивирования их in vitro Цитология. Т. 14. №10. 1274-1278 110
75. Цитофизиологические характеристики изолированних нейронов моллюска Lymnaea stagnalis in vitro: автореф. дис. канд. биол. наук. Пущино, 26.
77. Внутриклеточная регуляция дифференцировки и регенерации нейронов в культуре: Дис. д-ра биол. наук. Пущине,. 360с.
78. Костенко М.А., Мусиенко B.C., Смолихина Т.И. 1981 Влияние рН среды и внутриклеточного содержания Са на рост отростков нейронов прудовика в культуре Цитология. Т.23. №7. 779-787
79. Костенко М.А., Смолихина Т.И. 1
80. Метод получения изолированных нейронов моллюсков с высокой регенерационной активностью: А.с. СССР, 913254 Б.И. 10.
81. Кравченко Л.В., Хвыля СИ., Авреньева Л.И., Морозов И.А., Тутельян В.А. 1
82. Влияние Т2 токсина на ультраструктуру а активность органеллспецифических ферментов некоторых органов крыс. Цитология, Т.25, №11. 1264-69
83. Липина Т.В., Шорникова М.В., Ченцов Ю.С. 2
84. Ультраструктурная и морфометрическая характеристика митохондриома кардиомиоцитов некоторых видов беспозвоночных животных.
85. Митохондриом кардиомиоцитов желудочка некоторых брюхоногих моллюсков Цитология, т. 44. №2. с. 131-139
86. Лозина-Лозинский Л.К. (1972) Очерки по криобиологии: Адаптации и, устойчивость организмов и клеток к низким и сверхнизким температурам. Л.: Наука, 288 с.
88. Ультраструктурные изменения и репаративные процессы в центральной нервной системе при различных воздействиях. Л.: Медицина, 190с.
89. Мартемьянов В. И. 2001.//Эвол. биохим. и физиол. Т.37. №2. 107-111
90. Мельникова Е.В., Карнаухов В.Н. 1
91. Температурная зависимость соотношения односпиральных и двухспиральных нуклеиновых кислот в идентифицированных гигантских нейронах моллюска. Цитология, 22(4). 434-440.
92. Меркулова О.С, Даринский Ю.А. 1
93. Реакция нейрона на длительную стимуляцию. Л: Наука, 172с.
94. Михеева И.Б., Тирас Н.Р., мошков Д.А., Пашков В,И., Гришин Е.В. 2
95. Десмосомоподобные контакты маутнеровских нейронов как мишени действия яда скорпиона Цитология., т. 42. №7. с. 635-646
96. Мошков Д.А. 1985, Адаптация и ультраструктура нейрона. М. Наука, 200с.
97. Погорелая Н.Х., Скибо Г.Г., Троицкая Н.К. 1
98. Структурные особенности изолированных и перфузированных нейронов моллюсков Helix pomatia Нейрофизиология. Т. 12(3): 297-302.
99. Покровский А.А., Тутельян В.А. Лизосомы. М: Наука, 1976. 370с. 111
101. Пушкарь Н.С., Белоус A.M., Иткин Ю.А., Вишневский В.И., Розанов Л.Ф. 1
102. Низкотемпературная кристаллизация в биологических системах. Киев, «Нукова думка», 244 с
103. Пушкарь Н.С., Капрельянц А.С., Панков Е.Я. 1
104. Ультраструктура клетки при низких температурах. "Наук, думка", 140с.
105. Семакова К.Н., Киселева Е.В. 2
106. Миелиноподобные структуры как возможный источник гладкого эндоплазматического ретикулума в ранних ооцитах амфибий// Цитология, 45(8). 746-757
107. Сергиевич Л.А., Карнаухова Н.А. 2
108. Изменение функциональной активности синтетического аппарата тимоцитов крыс под действием острого и хронического у-излучения Радиационная иммунология. Т. 42,№1,48-53сс.
109. Сироткин В.В., Автандилов Г.П., Володин Н.Д. 1
110. Влияние радиационного облучения на размеры митохондрий кардиомиоцитов крыс. Бюллетень Экспериментальной Биологии и Медицины, №12. 751-54.
112. Состояние калия, натрия и воды в цитоплазме клеток. Киев: Наук, думка, 214
113. Сотников О.С., Курников А.Л., Казаченко В.Н., Бочарова Л.С. (1980) Сравнительный анализ морфологических и физиологических характеристик живого изолированного нейрона //Физиол. Журн. СССР им. И.М.Сеченова. Т. 66, 4, 497-507.
114. Теодорович В.Н., Козлов Г.А. 1
115. Влияние защитных веществ на процесс замораживания и оттаивания клеточных элементов крови. //В кн. Реакция клеток и их белковых компонентов на экстремальные воздействия. М-л., 51-57.
116. Ушатинская Р.С. (1990) Скрытая жизнь и анабиоз. М.: Наука. 182 с.
117. Фуллер Б., Грин К., Грищенко В.И. 2
118. Криоконсервирование для создания банка клеток: современные концепции на рубеже XXI столетия //Проблемы криобиологии, №2. 62-83.
120. Использование электрофизиологического метода для изучения механизмов криоповреждений и способов криозащиты Биофизика живой клетки, Т.6. с. 121-126
122. Общая цитология. МГУ, 350с.
123. Чуйко В.А. (1989) Механизм криозащитной эффективности и фармакологические свойства ДМСО //Криобиология. 1, 3-10
124. Albert E.N., Das G.D. (1984) Neocortical transplantans in the rat brain: an ultrastructural study //Experientia. V. 40, P. 294-298.
125. Anchordogue T.J., Cecchini C.A., Crowe J., Crowe L.M. (1991) Insights into thecryoprotective mechanism of dimethyl sulfoxide for phosholipid bilayers. Cry obiology, V. 28, P. 467-473. 112
126. Armitage W.J., Juss B.K., Easty D.L. 1
127. Differing effects of various cryoprotectants on intercellular junctions of epithelial cells //Cryobiology. V.32, P 52-59
129. Benjamin P.R., Slade T. Karole, Soffe S.R. 1980. The morphology of neurosecretory neurons in the pond snail, Lymnaea stagnalis, by the injection of Procion Yellow and horseradish peroxidase// Philosophical transactions of the royal society of London. Biological sciences, 290 (1042). 449-478
130. Biessmann H, Falkner FG, Saumweber H, Walter MF. 1
131. Disruption of vimentin cytoskeleton may play a role in heat shock response. In heat shock: from bacteria to man. MJ Schlesinger, M Ashbumer, and A Tissieres, editors. Cold Spring Harbor Laboratory, New York, 275-281.
132. Bocharova L.S., Kostenko M.A., Veprintsev B.N and Allachverdov B.L. 1
133. Copletely isolated molluscan neurons. An Ultrastructural study. Brain Res., 101: 185-198.
134. Borgia G, Cocchiararo M, Crowell J, Lambiase A, Nappa S, Schreil W, Piazza M. 1
135. Ultrastructural changes in hepatocytes of mice treatment with heroin Boll Soc Ital Biol Sper, Mar. 30; 58(6). 344-8.
136. Borgia G, Crowell J, Cocchiararo M, Lambiase A, Nappa S, Schreil W, Piazza M. 1
137. Ultrastructural changes in hepatocytes of mice treatment with тофЫпе Boll Soc Ital Biol Sper, Aug. 30; 58(16). 1075-8.
138. Brunet J-F, Pellerin L., Magostretti P., Villemure J-G. 2
139. Cryopreservation of human brain tissue allowing timely production of viable human brain cells for autologous transplantation. Cryobiology, V. 47, 2, P. 179-183.
140. Carvalho F., Sousa M., Oliveira E., Carvalheiro j Baldaia L. 1
141. Ultrustructure of oogenesis in Penaeus kerathurus (Crustacea, Dacapoda). I. Previtellogenic oocytes. J.Submicros. Cytol.Pathol. 30; 409-416.
142. Collier TJ, Gallagher MJ, Sladek CD. 1
143. Cryopreservation and storage of embryonic rat mesencephalic dopamine neurons for one year: comparison to fresh tissue in culture and neural grafts. Brain Res. ;623(2):249-56.
144. Darzynkiewicz Z., Traganos F., Sharpless Т., Melamed M.R. 1
145. Conformation of RNA//i5//M as studied by acridine orange staining and automated cytofluorometry. Exp. Cell Res. V.95, p. 143-153.
146. Dmitrieva E., Moshkov D.A., Gakhova E.N. 2
147. Ultrastructural changes of the mollusc neurons after cryopreservation Abs. VII east European conference of the international society for invertebrate neurobiology Simpler nervous systems. Kaliningrad Svetlogorsk Otradnoe, P. 39. 113
148. Biochemical and тофЬо1о§1са1 effect of long-term inhalation exposure of rats to ethylbenzene Xenobiotica, Apr; 15(4). 299-308.
149. Fahy CM, Lilley TH, Linsdell H, Douglas MS, Meryman HT. 1990 Cryoprotectant toxicity and cryoprotectant toxicity reduction: in search of molecular mechanisms. Cryobiology. Jun;27(3):247-
150. Fahy CM, Wowk B, Wu J, Phan J, Rasch Ch, Chang A, Zendejas E. 2
151. Cryopreservation of organs by vitrification; perspectives and recent advances Cryobiology, V.48(2). 157-78.
153. Cryopreservation of embryonic cerebral tissue of rat.Cryobiology. Apr;29(2):267-73.
154. Fieck RA, Benson E, Remner D, Day JG. 2
155. Studies of free radicalmediated cryoinjury in the unicellular green alga Euglena gracilis using a non-destructive hydroxyl radical assay: a novel approach for developing protistan cryopreservation strategies Free Radic Res. V.32. 157-70.
157. Alteration of hepatic microsomal structure and function by indium chloride. Ultrastructural, moфhometric, and biochemical studies Lab Invest, Apr; 48(4). 471-8.
158. Frodl E., Duan W.M., Sauer H., Kupsch A., Brundin P. 1
159. Human embryonic dopamine neurons xenografted to the rat: effects of cryopreservation and varying regional souce of donor cells on transplant survival, morphology and function //Brain Res., v.647, p.286-298
160. Frolkis V.V., Kvitnitskaya-Ryzhova T. Yu., Martynenko O. A. 1
161. Aging of neurons in the mollusk Lymnaea stagnalis small parietal ganglion: a moфho-functional comparison in the same neuron.// Exp.Gerontology, 30(5). 533-544.
162. Gakhova E.N., Kislov A.N., Chekurova N.R. 1
163. Study of membrane properties of mollusk neuron after freeze-storage at liquid nitrogen temperature for 8 years Infusionstherapie Transfusionsmedizin. V. 24. 5. P. 378-379
164. Gordon R.Ya., Bocharova L.S., Kruman L.I., Popov V.I., Kazantsev A.P., Khutzian S.S., Karnaukhov V.N. 1
165. Acridin orange as an indicator of the cytoplasmic ribosome state Cytometry, v. 29. P. 215-221.
166. Griffiths B.J. Nathan, Evans J.Peter. 2
167. Ultrastructural changes in hypothermically preserved hepatocytes. Cryobiology, V.40. 176-181 lOO.Hochachka P.W., Somero G.N. (1973) Strategies of biochemical adaptation. Saunder. 483 p.
168. Hook G.E., Gilmore L.B., Talley F.A. 1
169. Dissolution and reassembly of tubular myelin-like multilamellar structures from the lungs of patients with pulmonary alveolar proteinosis. Lab.Invest. 55: 194-208.
170. Horvath E., Kovacs K., Szabo S., Garg B.D., Tuchweber B. 1
171. Effect of cycloheximide on the fine structure of coфus lutein in intact and hypophysectomized rats Zellforsch Z., 146. 223-35. 114
172. Hunt Ch. J., Armitage S.E., Pegg D.E. 2
173. Cryopreservation of umbilical cord blood;
174. Tolerance of CD34+ cells to multimolar dimethyl sulphoxide and the effect of cooling rate on recovery after freezing and thawing Cryobiology, V.46(l). 76-87
175. Jacobv DB, Lindberg C, Ratliff J, Wetzel K, Stewart OR, Dinsmore J. 2
176. Comparison of fresh and cryopreserved porcine ventral mesencephalon cells transplanted in A rat model of Parkinsons disease.! Neurosci Res. Aug l;69(3):382-96.
178. Structural changes of the endoplasmic reticulum of sea urchin eggs during fertilization// Developmental biology, (156). 566-573
180. Effect of caffeine and reduced temperature (20 degrees C) on the organization of pre-Golgi and Golgi stack membranes. //J.Cell Biol. Mar; 120 (6): 1321-35.
181. Jensen S., Sorensen Т., Zimmer J. 1
182. Deep-freeze storage of immature rat hippo campae tissue prior to intracerebral transplantation //Neuro-Science Letters, v.22, p. 528.
183. Ultrustructure and biochemical studies of lipolysis by lipolysosomes in chick hepatocytes. Cell Tissue Res. 255: 559-565. 1 lO.Kandel E.R. (1976) Cellular Basis of behavior //San Francisco
185. Cryopreservation of primary neurons for tissue culture. Brain Res. Oct l;384(l):84-93. m.KisIov A.N., Chekurova N.R., Kataev A.A., Gakhova E.N. 2000. Abs. VI east European conference of the international society for invertebrate neurobiology Simpler nervous systems. Moscow-Pushchino, P. 65-66.
186. Koopmans J, HogenEsch I, Copray S, Middel B, van Diik H. Go KG, Staal M. 2
187. Cryopreservation of porcine fetal ventral mesencephalic tissue for intrastriatal transplantation in Parkinsons disease. Cell Transplant.; 10(7):573-81.
188. Kopeika J., Kopeika E., Zhang Т., Rawson D.M. 2
189. Studies on the toxi city of dimethyl sulfoxide, ethylene glycol, methanol and glycerol to loach (Misgumus fossilis) sperm and the effect on subsequent embryo development. Cryo-Letters.. V. 24, 6, P. 365-374.
190. Lenz H., Koertz W., Preussler H. (1975) The freezing threshold of the peripheral motor nerve: an electrophysiological and light-microscopical study on the sciatic nerve of the rabbit. Cryobiology, V. 12, P. 486-496.
191. Luyet В., Gonzales F. (1953) Growth of nerve tissue after freezing in liquid nitrogen //Biodynamica. V. 7, P. 171-173. 1 n.Mazur P. (1966) Physical and chemical basis of injury in single celled microorganisms subjecte d to freezing and thawing. Cryobiology. NY-L, Acad.Press. P. 213-315. 115
192. Meryman H.T. Williams R.J., Douglas M.St (Jr.) (1977) Freezing injury from "solution effects" and its prevention by natural and artificial cryprotection //Cryobiology. V. 14,3,287-312
193. Moshkov D.A., Tiras N.R., Saxon M.E. 1
194. Phalloidin changes the synaptic contacts ultrastructure//Naturwissenschaften,. V. 67. 194-195.
195. Negishi T, Ishii Y, Kawamura S, Kuroda Y, Yoshikawa Y. 2
196. Cryopreservation of brain tissue for primary culture. Exp Anim. Jul;51(4):383-90.
198. Effects of polycyclic aromatic hydrocarbons on molluscan lysosomes and endoplasmic reticulum Histochem J., Jun-Jul; 19(6-7). 357-68.
200. Biol. Struct. Morphog. V. 2. 3. P. 110-116.
201. PasicM., De sa Faria L.J. (1979) Effects and freezing on abdominal gangliaofAplysia//Cryobiology. V. 16, P. 390-400
202. Petite D, Calvet MC. 1995 Cryopreserved neuronal cells in long-term cultures of dissociated rat cerebral cortex: survival and morphometric characteristics as revealed by immunocytochemistry. Brain Res, Jan 16;669(2):263-74.
204. Morphometric characteristics of cryopreserved mesen cephalic dopamine neurons in culture. Brain Res. Sep 19;769(1):1-12.
206. Cryopreserved GABAergic neurons in cultures of rat cerebral cortex and mesencephalon: a comparative morphometric study with anti-GABA antibodies //Brain Research. 747. p. 279-289
207. Piccard J. J. Ultrastructure of the cementgland of a Xenopus laevis. 1.МофЬо1. 148: 192-207.
208. Pogorelaya N.K., Elekes K., Kiss 1.1
209. Electron microscopic investigation of a giant neuron identified in the right parietal ganglion of Lymnaea stagnalis L. //Acta biol. Acad. Sci. hung., 28 (4), 451-460
210. Pribor D.B., Nara A., 1969 Toxicity and cryoprotection by dimethyl sulfoxide and by glycerol in isolated frog sciatic nerves. Cryobiology, V.5, 6, P. 355-365. 116
211. Cryopreservation, culture, and transplantation of human fetal mesencephalic tissue into monkeys. Science. V. 242, 4879, P.768-71
212. Ring R.A., Tesar D. (1980) Cold-hardiness of the arctic beetle, Pytho americanus Kirby //J. Insect Physiol. V. 26, P. 763-764
213. Robbins R.J., Torres-Aleman I., Leranth C Bradberry C.W., Deutch A.Y., Welsh S., Roth R.H., Spenser D., Redmond E., Naftolin F. 1
214. Cryopreservation of human brain tissue Exp. Neurology 107., p. 208-213
216. Cryopreservation, survival function of intrastriatal fetal mesencephalic grafts in a rat model of Parkinsons disease //Exp Brain Res.,v.90, p.54-62.
218. Neurons in cell culture survive freezing. Effect on electric membrane properties. Exp Cell Res. ;162(2):566-73.
219. Silani V., Pizzuti A., Strada O. et al. 1
220. Human neuronal cell viability demonstrated in culture after cryopreservation //Brain Res. V. 473, 1, P. 169-174
221. Steponkus P.L., Langis R., Fujikawa S. 1
222. Cryopreservation of plant tissues by vitrification In Advances in low temperature biology. Ed. P.L.Steponkus. JAI Press, London, p. 1-61. HO.Strauss G.H., Kelly R.B., Sinsheimer R.L. (1968) Denaturation of RNA with dimethyl sulfoxide. Biopolymers. 6, P. 793-807.
223. Swett JW, Paramore CG, Turner DA. 1
224. Quantitative estimation of cryopreservation viability in rat fetal hippocampal cells. Exp Neurol. Oct;129(2):330-4.
225. Swindale N.V., Benjamin P.R. 1976. The anatomy of neurosecretory neurons in the pond snail Lymnaea stagnalis L. Philosophical transactions of the royal society of London. Biological sciences, 274 (931). 169-202.
227. Dynamics of the endoplasmic reticulum and Golgi apparatus during early sea uchin development// Molecular Biology of the Cell, (11).
228. Thomas GP, Welch WJ, Mathews MB, Feramisco JR. 1
229. Molecular and cellular effects of heat shock and related treatments of mammalian tissue culture cells. Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. (46). 985-996
231. Alteration in the cytoskeleton of the goldfish mauther cells under various pharmacological treatments Acta histochem, V. 41. 249-256.
232. Vartapetian Boris В., Andreeva Irina N., Generozova Inna P., Polyakova Lyli I., Maslova Inna P., Dolgikh Yulia I. and Stepanova Anna Yu. 2
233. Functional electron microscopy in studies of plant response and adaptation to anaerobic stress Annals of Botany 91: 155-172.
235. Ultrastructural organization of giant neurons of the mollusk Lymnaea stagnalis L under different environmental temperatures//Acta boil. Acad. Sci. hung., 28(4), 429-441pp. 117
236. Moфhological study of the mammalian stress response: characterization of changes in cytoplasmic organelles, cytoskeleton, and nucleoli, and appearance of intranuclear actin filaments in rat fibroblasts after heat-shock treatment// J.Cell biology. V. 101. 1198-1211.
240. Alteration of hepatocellular structure and fiinction by thallium chloride: ultrastructural, moфhometric, and biochemical studies //Toxicol Appl Pharmacol, Apr; 83(2). 218-29.
242. Vitrification of large tissues with dielectric warming: biological problems and some approaches to their solution// Crybiology, V.48(2). 179-89.
243. Yang H., Jia X.M., Ehertz S., McGann L.E. (1996) Mechanisms of cryoinjury and cryoprotection in split-thickness skin //Cryobiology. V. 33, P. 376-389 118
3. Цитология оогенеза. М: Наука, 204с.
4. Архипов В.В., Костенко М.А. 1
5. Подвижность и взаимодействие в культуре изолированных нейронов взрослых моллюсков Эвол. биохим. и физиол. Т. 17, №2. 187-191.
6. Белоус A.M., Гордиенко Е.А., Розанов Л.Ф. 1
7. Замораживание и криопротекция Биохимия мембран: Уч. пособие для биол. и мед. спец. вузов под ред. Болдырева А.А. М.: высш. шк. 80с
8. Белоус A.M., Грищенко В.И. (1994) Криобиология. Киев, «Наукова Думка», 432 с
10. Перезимовка водных организмов Гидробиологический журнал, 9(1-3). 45-82.
11. Боровягин В.Л., Сахаров Д.А. 1
12. Ультраструктура гигантских нейронов тритонии. Атлас. М.: Наука. 75с.
14. Изменение синтеза РНК при привыкании нейрона моллюска к электрическому раздражению В кн. Клеточные механизмы памяти. Пущино-на-Оке. 146-156.
16. Идентификация гигантских нейронов в центральной нервной системе брюхоногих моллюсков.// в сб. Приборы и методы для микроэлектродного исследования клеток. Пущино. 18-27.
17. Бродский В.Я. 1960. О способах фиксации и подготовки материала для количественного цитохимического анализа. Т.2, 5, 613с.
19. Трофика клетки. М: Наука. 356с.
21. Структурно-функциональная характеристика гигантских нейронов прудовика.// Дис...канд.биол.наук.: Пущино, 111с.
22. Виленчик М.М. (1983) Сколько лет можно хранить зародышевые клетки в криоконсервированном состоянии без существенного повреждения их генома. Консервация генетических ресурсов. Пущино: ОНТИПНЦРАН.21С.
23. Электронная гистохимия. М. Мир, 485с., с.45.
25. Трансмембранные ионные потоки возможные регуляторы синтеза РНК в нейронах: Дис...к-т биол.наук Пущино, Инт биофизики клетки, 206с. 16,Гахова Э.Н. 1
26. Генетический криобанк как способ сохранения биоразнообразия водных беспозвоночных// Биофизика живой клетки, т.6,с.21-27.
27. Гахова Э.Н., Дмитриева Е.В. 2
28. Криоконсервация нервной ткани //Биофизика живой клетки, т. 7, с.65-68. 108 1.
29. Гигантские нейроны сохраняют жизнеспособность после глубокого замораживания мозга пресноводного моллюска Lymnaea stagnalis Ь//Криобилогия. X2l, 19-21
30. Гахова Э.Н., Корн О.М., БуцукС.В. 1
32. Гахова Э.Н., Крастс И.В., Найденко Т.Х., Савельева Н.А., Бессонов Б.И., БуцукС.В., Вепринцев Б.Н. 1
33. Развитие зародышей морского ежа после низкотемпературной криоконсервации //Онтогенез, т. 19. с. 175-180
34. Голдовский A.M. (1981) Анабиоз. Л.: Наука, 136 с.
35. Гольцев А.Н., Гурина Т.М., Бабенко Н.Н., Останков М.В. 2
36. Влияние различных режимов криоконсервировании на некоторые характеристики эмбриональных нервных клеток Проблемы криобиологии, №1. 46-50
38. Исследование генерализованного метаболического ответа нервных клеток на смену функционального состояния и на действие повреждающих факторов: Дис... д-р биол. наук /Институт биофизики клетки РАН (ИБК РАН) Защищена 2000.12.06. УДК 576.3.331. 147 с.: 5 таб.} 42 ил.} Библиогр.: 416 назв.
39. Гордон Р.Я., Бочарова Л.С., Попов В.И., Карнаухов В.Н. 1
40. Различия в состоянии рибосом нервных клеток, выявляемые при флуорохромировании акридиновым оранжевым.// Цитология, 31(1). 7379.
41. Дмитриева Е.В. Гахова Э.Н., Карнаухов В.Н., Карнаухова Н.А., Кислов А.Н., Сергиевич Л.А. (2004). Изменение синтетической активности нейронов изолированного мозга моллюска Lymnaea stagnalis L после замораживания в жидком азоте// Материалы XYII совещания «Консервация генетических ресурсов», 19-21 ноября 2001г., Пущино.
43. Исследование метаболизма РНК и изменений в ультраструктуре и цитоморфологии нейрона при генерации им потенциалов действия: Дис.. .к-т биол.наук /Институт биофизики клетки РАН (ИБК РАН). 162с.
44. Дьяконова Т.Л., Вепринцев Б.Н. 1
45. Особенности структурной и функциональной организации и метаболической активности нейронов прудовика. М. Деп. В ВИНИТИ 01.06.70., №819-69, 26с
46. Моллюски пресных вод СССР. М. Изд-во Акад. Наук СССР, 376с.
48. Электрофизиологические характеристики гигантских нейронов моллюска большого прудовика В сб. Биофизика живой клетки. Под ред. Акад. Франка Г.М. Пущино,
49. Зернов А. 1928.0 зимовке водяных организмов во льду и мерзлой земле// Русский гидробиологический журнал, 7(1-2). 1-7. 109
50. Криоконсервированные нейроны Lymnaea stagnalis способны к морфологической дифференцировке в культуре //Биофизика, т. 49, вып. 4, с. 710-714.
51. Каранова М.В., Дмитриева Е.В., Березин Д.Е., Гахова Э.Н. (2004) Измерение точки замерзания тканевых жидкостей прудовика Lymnaea stagnalis L и ротана Perccottus glenhi как тест на присутствие криопротекторов// Материалы XYII совещания «Консервация генетических ресурсов», 19-21 ноября 2001г., Пущино.
53. Люминесцентный спектральный анализ клетки. М. Наука, 207с.
55. Биологические функции каротиноидов. М.: Наука, 240.
57. Спектральный анализ в клеточном мониторинге состояния окружающей среды. М.: Наука, с. 186.
58. Карнаухов В.Н., Вартонь С. 1
59. Ультраструктурная организация каротиноидсодержащих гранул в нейронах моллюсков Цитология. Т. 13,№9. 1088-1093.
60. Карнаухов В.Н., Карнаухова Н.А., Яшин В.А. 1
61. Методы и техника флуоресцентной диагностики. ОНТИ НЦБИ, Пущино. 32с.
62. Карнаухов В.Н., Яшин В.А., Казанцев А.П., Карнаухова Н.А., Кулаков В.И. 1
63. Двухволновый микрофлуориметр-фотометр на базе стандартных блоков и узлов. Цитология. Т.29, №1, с.50-53.
64. Карнаухова Н.А., Сергиевич Л.А., Дмитриева Е.В., Гахова Э.Н., Карнаухов В.Н. 2
65. Исследование функциональной активности нейронов ганглиев большого прудовика при изменении температуры. Биофизика. Т. 47, вып. 6, 1080-1985сс.
66. Катков И.И. (1999) Некоторые аспекты осмотических реакций клеток.
67. Основные физические явления и условия существования точки максимальн ого отклонения объема. Проблемы криобиологии, вып.2, с. 3-11.
68. Кислов А.Н., Пластинкин Д.В. 1
69. Действие некоторых криопротекторов на мембрану нейронов моллюска //Биофизика живоц клетки,, Т.6, с. 118-120.
70. Кленикова В.А., Малинаускайте Л.Д. 1
71. Накопление РНК в теле нейронов как показатель их функциональной деафферентации// Физиол. ж.СССР. 66(3). 339-343
72. Корнилова СВ., Леонтьев B.C., Шкорбатов А.Г., Благой Ю.П., Козлов А.В., Григорьев Д.Н. (1993) Изучение действия криопротекторов на макромолекулярные параметры Д1Ж. Проблемы криобиологии, вып. 4, 20-24.
74. Выделение одиночных нервных клеток из мозга моллюска Lymnaea stagnalis для дальнейшего культивирования их in vitro Цитология. Т. 14. №10. 1274-1278 110
75. Цитофизиологические характеристики изолированних нейронов моллюска Lymnaea stagnalis in vitro: автореф. дис. канд. биол. наук. Пущино, 26.
77. Внутриклеточная регуляция дифференцировки и регенерации нейронов в культуре: Дис. д-ра биол. наук. Пущине,. 360с.
78. Костенко М.А., Мусиенко B.C., Смолихина Т.И. 1981 Влияние рН среды и внутриклеточного содержания Са на рост отростков нейронов прудовика в культуре Цитология. Т.23. №7. 779-787
79. Костенко М.А., Смолихина Т.И. 1
80. Метод получения изолированных нейронов моллюсков с высокой регенерационной активностью: А.с. СССР, 913254 Б.И. 10.
81. Кравченко Л.В., Хвыля СИ., Авреньева Л.И., Морозов И.А., Тутельян В.А. 1
82. Влияние Т2 токсина на ультраструктуру а активность органеллспецифических ферментов некоторых органов крыс. Цитология, Т.25, №11. 1264-69
83. Липина Т.В., Шорникова М.В., Ченцов Ю.С. 2
84. Ультраструктурная и морфометрическая характеристика митохондриома кардиомиоцитов некоторых видов беспозвоночных животных.
85. Митохондриом кардиомиоцитов желудочка некоторых брюхоногих моллюсков Цитология, т. 44. №2. с. 131-139
86. Лозина-Лозинский Л.К. (1972) Очерки по криобиологии: Адаптации и, устойчивость организмов и клеток к низким и сверхнизким температурам. Л.: Наука, 288 с.
88. Ультраструктурные изменения и репаративные процессы в центральной нервной системе при различных воздействиях. Л.: Медицина, 190с.
89. Мартемьянов В. И. 2001.//Эвол. биохим. и физиол. Т.37. №2. 107-111
90. Мельникова Е.В., Карнаухов В.Н. 1
91. Температурная зависимость соотношения односпиральных и двухспиральных нуклеиновых кислот в идентифицированных гигантских нейронах моллюска. Цитология, 22(4). 434-440.
92. Меркулова О.С, Даринский Ю.А. 1
93. Реакция нейрона на длительную стимуляцию. Л: Наука, 172с.
94. Михеева И.Б., Тирас Н.Р., мошков Д.А., Пашков В,И., Гришин Е.В. 2
95. Десмосомоподобные контакты маутнеровских нейронов как мишени действия яда скорпиона Цитология., т. 42. №7. с. 635-646
96. Мошков Д.А. 1985, Адаптация и ультраструктура нейрона. М. Наука, 200с.
97. Погорелая Н.Х., Скибо Г.Г., Троицкая Н.К. 1
98. Структурные особенности изолированных и перфузированных нейронов моллюсков Helix pomatia Нейрофизиология. Т. 12(3): 297-302.
99. Покровский А.А., Тутельян В.А. Лизосомы. М: Наука, 1976. 370с. 111
101. Пушкарь Н.С., Белоус A.M., Иткин Ю.А., Вишневский В.И., Розанов Л.Ф. 1
102. Низкотемпературная кристаллизация в биологических системах. Киев, «Нукова думка», 244 с
103. Пушкарь Н.С., Капрельянц А.С., Панков Е.Я. 1
104. Ультраструктура клетки при низких температурах. "Наук, думка", 140с.
105. Семакова К.Н., Киселева Е.В. 2
106. Миелиноподобные структуры как возможный источник гладкого эндоплазматического ретикулума в ранних ооцитах амфибий// Цитология, 45(8). 746-757
107. Сергиевич Л.А., Карнаухова Н.А. 2
108. Изменение функциональной активности синтетического аппарата тимоцитов крыс под действием острого и хронического у-излучения Радиационная иммунология. Т. 42,№1,48-53сс.
109. Сироткин В.В., Автандилов Г.П., Володин Н.Д. 1
110. Влияние радиационного облучения на размеры митохондрий кардиомиоцитов крыс. Бюллетень Экспериментальной Биологии и Медицины, №12. 751-54.
112. Состояние калия, натрия и воды в цитоплазме клеток. Киев: Наук, думка, 214
113. Сотников О.С., Курников А.Л., Казаченко В.Н., Бочарова Л.С. (1980) Сравнительный анализ морфологических и физиологических характеристик живого изолированного нейрона //Физиол. Журн. СССР им. И.М.Сеченова. Т. 66, 4, 497-507.
114. Теодорович В.Н., Козлов Г.А. 1
115. Влияние защитных веществ на процесс замораживания и оттаивания клеточных элементов крови. //В кн. Реакция клеток и их белковых компонентов на экстремальные воздействия. М-л., 51-57.
116. Ушатинская Р.С. (1990) Скрытая жизнь и анабиоз. М.: Наука. 182 с.
117. Фуллер Б., Грин К., Грищенко В.И. 2
118. Криоконсервирование для создания банка клеток: современные концепции на рубеже XXI столетия //Проблемы криобиологии, №2. 62-83.
120. Использование электрофизиологического метода для изучения механизмов криоповреждений и способов криозащиты Биофизика живой клетки, Т.6. с. 121-126
122. Общая цитология. МГУ, 350с.
123. Чуйко В.А. (1989) Механизм криозащитной эффективности и фармакологические свойства ДМСО //Криобиология. 1, 3-10
124. Albert E.N., Das G.D. (1984) Neocortical transplantans in the rat brain: an ultrastructural study //Experientia. V. 40, P. 294-298.
125. Anchordogue T.J., Cecchini C.A., Crowe J., Crowe L.M. (1991) Insights into thecryoprotective mechanism of dimethyl sulfoxide for phosholipid bilayers. Cry obiology, V. 28, P. 467-473. 112
126. Armitage W.J., Juss B.K., Easty D.L. 1
127. Differing effects of various cryoprotectants on intercellular junctions of epithelial cells //Cryobiology. V.32, P 52-59
129. Benjamin P.R., Slade T. Karole, Soffe S.R. 1980. The morphology of neurosecretory neurons in the pond snail, Lymnaea stagnalis, by the injection of Procion Yellow and horseradish peroxidase// Philosophical transactions of the royal society of London. Biological sciences, 290 (1042). 449-478
130. Biessmann H, Falkner FG, Saumweber H, Walter MF. 1
131. Disruption of vimentin cytoskeleton may play a role in heat shock response. In heat shock: from bacteria to man. MJ Schlesinger, M Ashbumer, and A Tissieres, editors. Cold Spring Harbor Laboratory, New York, 275-281.
132. Bocharova L.S., Kostenko M.A., Veprintsev B.N and Allachverdov B.L. 1
133. Copletely isolated molluscan neurons. An Ultrastructural study. Brain Res., 101: 185-198.
134. Borgia G, Cocchiararo M, Crowell J, Lambiase A, Nappa S, Schreil W, Piazza M. 1
135. Ultrastructural changes in hepatocytes of mice treatment with heroin Boll Soc Ital Biol Sper, Mar. 30; 58(6). 344-8.
136. Borgia G, Crowell J, Cocchiararo M, Lambiase A, Nappa S, Schreil W, Piazza M. 1
137. Ultrastructural changes in hepatocytes of mice treatment with тофЫпе Boll Soc Ital Biol Sper, Aug. 30; 58(16). 1075-8.
138. Brunet J-F, Pellerin L., Magostretti P., Villemure J-G. 2
139. Cryopreservation of human brain tissue allowing timely production of viable human brain cells for autologous transplantation. Cryobiology, V. 47, 2, P. 179-183.
140. Carvalho F., Sousa M., Oliveira E., Carvalheiro j Baldaia L. 1
141. Ultrustructure of oogenesis in Penaeus kerathurus (Crustacea, Dacapoda). I. Previtellogenic oocytes. J.Submicros. Cytol.Pathol. 30; 409-416.
142. Collier TJ, Gallagher MJ, Sladek CD. 1
143. Cryopreservation and storage of embryonic rat mesencephalic dopamine neurons for one year: comparison to fresh tissue in culture and neural grafts. Brain Res. ;623(2):249-56.
144. Darzynkiewicz Z., Traganos F., Sharpless Т., Melamed M.R. 1
145. Conformation of RNA//i5//M as studied by acridine orange staining and automated cytofluorometry. Exp. Cell Res. V.95, p. 143-153.
146. Dmitrieva E., Moshkov D.A., Gakhova E.N. 2
147. Ultrastructural changes of the mollusc neurons after cryopreservation Abs. VII east European conference of the international society for invertebrate neurobiology Simpler nervous systems. Kaliningrad Svetlogorsk Otradnoe, P. 39. 113
148. Biochemical and тофЬо1о§1са1 effect of long-term inhalation exposure of rats to ethylbenzene Xenobiotica, Apr; 15(4). 299-308.
149. Fahy CM, Lilley TH, Linsdell H, Douglas MS, Meryman HT. 1990 Cryoprotectant toxicity and cryoprotectant toxicity reduction: in search of molecular mechanisms. Cryobiology. Jun;27(3):247-
150. Fahy CM, Wowk B, Wu J, Phan J, Rasch Ch, Chang A, Zendejas E. 2
151. Cryopreservation of organs by vitrification; perspectives and recent advances Cryobiology, V.48(2). 157-78.
153. Cryopreservation of embryonic cerebral tissue of rat.Cryobiology. Apr;29(2):267-73.
154. Fieck RA, Benson E, Remner D, Day JG. 2
155. Studies of free radicalmediated cryoinjury in the unicellular green alga Euglena gracilis using a non-destructive hydroxyl radical assay: a novel approach for developing protistan cryopreservation strategies Free Radic Res. V.32. 157-70.
157. Alteration of hepatic microsomal structure and function by indium chloride. Ultrastructural, moфhometric, and biochemical studies Lab Invest, Apr; 48(4). 471-8.
158. Frodl E., Duan W.M., Sauer H., Kupsch A., Brundin P. 1
159. Human embryonic dopamine neurons xenografted to the rat: effects of cryopreservation and varying regional souce of donor cells on transplant survival, morphology and function //Brain Res., v.647, p.286-298
160. Frolkis V.V., Kvitnitskaya-Ryzhova T. Yu., Martynenko O. A. 1
161. Aging of neurons in the mollusk Lymnaea stagnalis small parietal ganglion: a moфho-functional comparison in the same neuron.// Exp.Gerontology, 30(5). 533-544.
162. Gakhova E.N., Kislov A.N., Chekurova N.R. 1
163. Study of membrane properties of mollusk neuron after freeze-storage at liquid nitrogen temperature for 8 years Infusionstherapie Transfusionsmedizin. V. 24. 5. P. 378-379
164. Gordon R.Ya., Bocharova L.S., Kruman L.I., Popov V.I., Kazantsev A.P., Khutzian S.S., Karnaukhov V.N. 1
165. Acridin orange as an indicator of the cytoplasmic ribosome state Cytometry, v. 29. P. 215-221.
166. Griffiths B.J. Nathan, Evans J.Peter. 2
167. Ultrastructural changes in hypothermically preserved hepatocytes. Cryobiology, V.40. 176-181 lOO.Hochachka P.W., Somero G.N. (1973) Strategies of biochemical adaptation. Saunder. 483 p.
168. Hook G.E., Gilmore L.B., Talley F.A. 1
169. Dissolution and reassembly of tubular myelin-like multilamellar structures from the lungs of patients with pulmonary alveolar proteinosis. Lab.Invest. 55: 194-208.
170. Horvath E., Kovacs K., Szabo S., Garg B.D., Tuchweber B. 1
171. Effect of cycloheximide on the fine structure of coфus lutein in intact and hypophysectomized rats Zellforsch Z., 146. 223-35. 114
172. Hunt Ch. J., Armitage S.E., Pegg D.E. 2
173. Cryopreservation of umbilical cord blood;
174. Tolerance of CD34+ cells to multimolar dimethyl sulphoxide and the effect of cooling rate on recovery after freezing and thawing Cryobiology, V.46(l). 76-87
175. Jacobv DB, Lindberg C, Ratliff J, Wetzel K, Stewart OR, Dinsmore J. 2
176. Comparison of fresh and cryopreserved porcine ventral mesencephalon cells transplanted in A rat model of Parkinsons disease.! Neurosci Res. Aug l;69(3):382-96.
178. Structural changes of the endoplasmic reticulum of sea urchin eggs during fertilization// Developmental biology, (156). 566-573
180. Effect of caffeine and reduced temperature (20 degrees C) on the organization of pre-Golgi and Golgi stack membranes. //J.Cell Biol. Mar; 120 (6): 1321-35.
181. Jensen S., Sorensen Т., Zimmer J. 1
182. Deep-freeze storage of immature rat hippo campae tissue prior to intracerebral transplantation //Neuro-Science Letters, v.22, p. 528.
183. Ultrustructure and biochemical studies of lipolysis by lipolysosomes in chick hepatocytes. Cell Tissue Res. 255: 559-565. 1 lO.Kandel E.R. (1976) Cellular Basis of behavior //San Francisco
185. Cryopreservation of primary neurons for tissue culture. Brain Res. Oct l;384(l):84-93. m.KisIov A.N., Chekurova N.R., Kataev A.A., Gakhova E.N. 2000. Abs. VI east European conference of the international society for invertebrate neurobiology Simpler nervous systems. Moscow-Pushchino, P. 65-66.
186. Koopmans J, HogenEsch I, Copray S, Middel B, van Diik H. Go KG, Staal M. 2
187. Cryopreservation of porcine fetal ventral mesencephalic tissue for intrastriatal transplantation in Parkinsons disease. Cell Transplant.; 10(7):573-81.
188. Kopeika J., Kopeika E., Zhang Т., Rawson D.M. 2
189. Studies on the toxi city of dimethyl sulfoxide, ethylene glycol, methanol and glycerol to loach (Misgumus fossilis) sperm and the effect on subsequent embryo development. Cryo-Letters.. V. 24, 6, P. 365-374.
190. Lenz H., Koertz W., Preussler H. (1975) The freezing threshold of the peripheral motor nerve: an electrophysiological and light-microscopical study on the sciatic nerve of the rabbit. Cryobiology, V. 12, P. 486-496.
191. Luyet В., Gonzales F. (1953) Growth of nerve tissue after freezing in liquid nitrogen //Biodynamica. V. 7, P. 171-173. 1 n.Mazur P. (1966) Physical and chemical basis of injury in single celled microorganisms subjecte d to freezing and thawing. Cryobiology. NY-L, Acad.Press. P. 213-315. 115
192. Meryman H.T. Williams R.J., Douglas M.St (Jr.) (1977) Freezing injury from "solution effects" and its prevention by natural and artificial cryprotection //Cryobiology. V. 14,3,287-312
193. Moshkov D.A., Tiras N.R., Saxon M.E. 1
194. Phalloidin changes the synaptic contacts ultrastructure//Naturwissenschaften,. V. 67. 194-195.
195. Negishi T, Ishii Y, Kawamura S, Kuroda Y, Yoshikawa Y. 2
196. Cryopreservation of brain tissue for primary culture. Exp Anim. Jul;51(4):383-90.
198. Effects of polycyclic aromatic hydrocarbons on molluscan lysosomes and endoplasmic reticulum Histochem J., Jun-Jul; 19(6-7). 357-68.
200. Biol. Struct. Morphog. V. 2. 3. P. 110-116.
201. PasicM., De sa Faria L.J. (1979) Effects and freezing on abdominal gangliaofAplysia//Cryobiology. V. 16, P. 390-400
202. Petite D, Calvet MC. 1995 Cryopreserved neuronal cells in long-term cultures of dissociated rat cerebral cortex: survival and morphometric characteristics as revealed by immunocytochemistry. Brain Res, Jan 16;669(2):263-74.
204. Morphometric characteristics of cryopreserved mesen cephalic dopamine neurons in culture. Brain Res. Sep 19;769(1):1-12.
206. Cryopreserved GABAergic neurons in cultures of rat cerebral cortex and mesencephalon: a comparative morphometric study with anti-GABA antibodies //Brain Research. 747. p. 279-289
207. Piccard J. J. Ultrastructure of the cementgland of a Xenopus laevis. 1.МофЬо1. 148: 192-207.
208. Pogorelaya N.K., Elekes K., Kiss 1.1
209. Electron microscopic investigation of a giant neuron identified in the right parietal ganglion of Lymnaea stagnalis L. //Acta biol. Acad. Sci. hung., 28 (4), 451-460
210. Pribor D.B., Nara A., 1969 Toxicity and cryoprotection by dimethyl sulfoxide and by glycerol in isolated frog sciatic nerves. Cryobiology, V.5, 6, P. 355-365. 116
211. Cryopreservation, culture, and transplantation of human fetal mesencephalic tissue into monkeys. Science. V. 242, 4879, P.768-71
212. Ring R.A., Tesar D. (1980) Cold-hardiness of the arctic beetle, Pytho americanus Kirby //J. Insect Physiol. V. 26, P. 763-764
213. Robbins R.J., Torres-Aleman I., Leranth C Bradberry C.W., Deutch A.Y., Welsh S., Roth R.H., Spenser D., Redmond E., Naftolin F. 1
214. Cryopreservation of human brain tissue Exp. Neurology 107., p. 208-213
216. Cryopreservation, survival function of intrastriatal fetal mesencephalic grafts in a rat model of Parkinsons disease //Exp Brain Res.,v.90, p.54-62.
218. Neurons in cell culture survive freezing. Effect on electric membrane properties. Exp Cell Res. ;162(2):566-73.
219. Silani V., Pizzuti A., Strada O. et al. 1
220. Human neuronal cell viability demonstrated in culture after cryopreservation //Brain Res. V. 473, 1, P. 169-174
221. Steponkus P.L., Langis R., Fujikawa S. 1
222. Cryopreservation of plant tissues by vitrification In Advances in low temperature biology. Ed. P.L.Steponkus. JAI Press, London, p. 1-61. HO.Strauss G.H., Kelly R.B., Sinsheimer R.L. (1968) Denaturation of RNA with dimethyl sulfoxide. Biopolymers. 6, P. 793-807.
223. Swett JW, Paramore CG, Turner DA. 1
224. Quantitative estimation of cryopreservation viability in rat fetal hippocampal cells. Exp Neurol. Oct;129(2):330-4.
225. Swindale N.V., Benjamin P.R. 1976. The anatomy of neurosecretory neurons in the pond snail Lymnaea stagnalis L. Philosophical transactions of the royal society of London. Biological sciences, 274 (931). 169-202.
227. Dynamics of the endoplasmic reticulum and Golgi apparatus during early sea uchin development// Molecular Biology of the Cell, (11).
228. Thomas GP, Welch WJ, Mathews MB, Feramisco JR. 1
229. Molecular and cellular effects of heat shock and related treatments of mammalian tissue culture cells. Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. (46). 985-996
231. Alteration in the cytoskeleton of the goldfish mauther cells under various pharmacological treatments Acta histochem, V. 41. 249-256.
232. Vartapetian Boris В., Andreeva Irina N., Generozova Inna P., Polyakova Lyli I., Maslova Inna P., Dolgikh Yulia I. and Stepanova Anna Yu. 2
233. Functional electron microscopy in studies of plant response and adaptation to anaerobic stress Annals of Botany 91: 155-172.
235. Ultrastructural organization of giant neurons of the mollusk Lymnaea stagnalis L under different environmental temperatures//Acta boil. Acad. Sci. hung., 28(4), 429-441pp. 117
236. Moфhological study of the mammalian stress response: characterization of changes in cytoplasmic organelles, cytoskeleton, and nucleoli, and appearance of intranuclear actin filaments in rat fibroblasts after heat-shock treatment// J.Cell biology. V. 101. 1198-1211.
240. Alteration of hepatocellular structure and fiinction by thallium chloride: ultrastructural, moфhometric, and biochemical studies //Toxicol Appl Pharmacol, Apr; 83(2). 218-29.
242. Vitrification of large tissues with dielectric warming: biological problems and some approaches to their solution// Crybiology, V.48(2). 179-89.
243. Yang H., Jia X.M., Ehertz S., McGann L.E. (1996) Mechanisms of cryoinjury and cryoprotection in split-thickness skin //Cryobiology. V. 33, P. 376-389 118
